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大量DNA產(chǎn)物純化試劑盒說明書
MaxiDNA Purification Kit
大量DNA產(chǎn)物純化試劑盒
目錄號: YJ0517
保 存: 室溫
組分說明
Cat.No. YJ0517
KitSize 50
BufferPB 60ml
BufferPS 15ml
BufferPW(concentrate) 10ml
BufferEB 10ml
SpinColumnDL 50
CollectionTube(2ml) 50
產(chǎn)品簡介
本試劑盒采用新型硅基質膜技術,通過快速簡單的結合-洗滌-洗脫步驟即可從大量的 PCR 產(chǎn)物或酶反 應液(酶切,連接,探針標記等)中純化 50 bp-50 kb 的 DNA 片段,純化過程中可有效去除引物、寡核苷酸、酶等雜質,從而獲得高純度,高濃度,完整性好的 DNA 片段,回收率高達 90%。本試劑盒回收純化的 DNA 可 直接用于測序、連接和轉化、標記、體外轉錄等分子生物學實驗。
注意事項
1. 本試劑盒可無選擇性的回收溶液中所有 DNA 片段,如需選擇性回收特定片段,同時去除其他不同大小片段,請選擇我公司的膠回收試劑盒(YJ0524, 加 YJ2302,YJ0518 或 YJ0526)。
2. *次使用前應按照試劑瓶標簽的說明在BufferPW中加入無水乙醇。
3. 使用前請檢查BufferPB是否出現(xiàn)結晶或者沉淀,如有結晶或者沉淀現(xiàn)象,可在37℃水浴幾分鐘,即可恢復澄清。
4. 回收率與初始DNA量和洗脫體積有關。
5. 所有離心步驟均為使用臺式離心機在室溫下離心。
自備:無水乙醇,離心管
操作步驟
1. 估計DNA反應液的體積,加入5倍體積的Buffer PB,充分混勻(如DNA反應體系為100μl,則加 入500μlBufferPB,無需去除石蠟油或礦物油)。
注意:在加入BufferPB后檢測溶液的pH值,若pH值大于7.5,可向其中加入10-30μl 的3M醋酸鈉(pH5.0),從而將pH值調到5-7。
2. 柱平衡:向已裝入收集管(CollectionTube)中的吸附柱(SpinColumnDL)中加入200μl Buffer PS, 12,000rpm(~13,400×g)離心2分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
3. 將步驟1中所得溶液加入到已裝入收集管的吸附柱中,室溫放置2分鐘,12,000rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱放回收集管中。
注意:吸附柱容積為700μl,若樣品體積大于700μl可分批加入 。
4. 向吸附柱中加入650 μl Buffer PW(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),12,000rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱放回收集管中。
注意:如果純化的DNA用于鹽敏感實驗(例如平末端連接實驗或直接測序),建議加入BufferPW后靜置2-5分鐘再離心。
5. 12,000rpm離心2分鐘,倒掉收集管中的廢液。將吸附柱置于室溫數(shù)分鐘,以*晾干。
注意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除,乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶促反應(酶切、PCR等)。為確保下游實驗不受殘留乙醇的影響,建議將吸附柱開蓋,置于室溫放置數(shù)分鐘,以*晾干吸附材料中殘余的乙醇。
6. 將吸附柱放到一個新離心管(自備)中,向吸附膜中間位置懸空滴加100 μl Buffer EB(pH 8.5),室溫放置2分鐘。12,000rpm離心1分鐘,收集DNA溶液。-20℃保存DNA。
注意:1)洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液,應保證其pH值在7.0-8.5之間(可以用NaOH將水的pH值調到此范圍)。
2)為了提高DNA的回收量,可將離心得到的溶液重新滴加到吸附柱中,重復步驟6。
3)洗脫體積不應小于50μl,體積過少會影響回收效率。
4)如果使用TE洗脫,需要考慮其中含有的EDTA是否會影響后續(xù)的酶促反應。
5)回收大于10kb的DNA片段時,BufferEB應在50℃水浴中預熱,適當延長吸附和洗脫時間,可增加回收效率。